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當我們說到驅動癌癥發(fā)生的基因,說的有可能是激活的原癌基因,也有可能是突變失活的抑癌基因。前者是目前大多數抑制劑類靶向藥的靶點,但后者由于是功能缺失性突變,往往很難被藥物直接恢復功能,最有名的例子就是TP53。
自被發(fā)現(xiàn)后40余年,目前還沒有針對突變TP53/p53蛋白的靶向藥物出現(xiàn),因為它缺乏穩(wěn)定的可結合位點,難以精確地調控蛋白功能。
今日,《自然》雜志發(fā)表的一篇論文提供了全新的解決思路——不局限于修復或敲除突變基因,而是精確地將攜帶突變抑癌基因的細胞徹底清除。
這一方法依賴于CRISPR-Cas12a2可被特定mRNA激活進而無差別粉碎染色質、誘導細胞死亡的特性,可以精確地殺死攜帶特定突變基因的細胞。這項研究的通訊作者,正是因共同發(fā)現(xiàn)CRISPR-Cas9基因編輯技術獲得2020年諾貝爾化學獎的Jennifer Doudna,第一作者為曾京昆。
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CRISPR?Cas12a2是CRISPR家族中功能非常特別的一種。Cas12a2于2023年被發(fā)現(xiàn) ,是一種受RNA引導、RNA觸發(fā)的核酸酶,它在識別到特定RNA后,會瞬間轉變?yōu)椤皬椈傻丁睒嬒螅S后無差別切割RNA和DNA,造成染色質粉碎(Chromatin Shredding),導致細胞進入休眠或死亡,從而阻斷病毒傳播。因此,科學家們也形象地稱它為“基因碎紙機”。
這樣的功能,正好適合用來當惡變細胞的“劊子手”。
研究者首先在細胞中測試了CRISPR?Cas12a2的性能,確認Cas12a2不僅能夠降解裸露的質粒,也能有效切割染色質結構。實驗中,Cas12a2傾向于切割核小體之間的連接區(qū),形成特征性的DNA階梯狀條帶。Cas12a2的殺傷效力與靶標RNA的豐度呈正相關。
研究人員針對EGFR E746_A750缺失突變設計了跨接頭gRNA,成功在細胞模型中實現(xiàn)了對突變細胞的特異性殺傷,其50%生長抑制濃度(GR50)僅為0.055 nM,而對野生型細胞無影響。
研究者也針對更具挑戰(zhàn)性的單核苷酸變異(SNV)進行了實驗,如TP53 R248Q,選擇性最高的R248Q gRNA3對突變細胞的抑制力比野生型細胞高出約100倍。
研究者在c-MYC肝癌和p53 R248Q突變肺癌兩種小鼠模型中進行了實驗,脂質納米顆粒遞送的CRISPR?Cas12a2可顯著降低小鼠腫瘤負荷、延遲腫瘤轉移,且未檢查到明顯的毒性或組織損傷。
不過,研究者在組織分析時發(fā)現(xiàn),治療組癌細胞中TP53表達水平顯著降低,提示靶標轉錄本的下調可能是腫瘤產生耐藥的一種潛在方式。
Cas12a2不需要與突變蛋白結合,只要檢測到突變RNA即可觸發(fā)療效,這繞過了p53等轉錄因子難以設計小分子藥物的困境。這項技術具有高度可編程性,通過制造不同的gRNA即可靶向不同突變,較傳統(tǒng)療法迭代也快得多。
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參考資料:
[1]Zeng, J., Cheng, Z., Chen, H. et al. Targeting Cancer-Specific Mutations with RNA-Triggered Chromatin Shredding. Nature (2026). https://doi.org/10.1038/s41586-026-10738-7
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本文作者丨代絲雨
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